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協(xié)同調(diào)控植物DNA甲基化與Polycomb沉默的表觀遺傳機(jī)制的研究

瀏覽次數(shù):231 發(fā)布日期:2025-12-31  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

2025年11月20日,南方科技大學(xué)朱健康院士團(tuán)隊(duì)在《Proc Natl Acad Sci U S A》(PNAS)雜志發(fā)表題為“A chromatin-linked CPL2–PHD2/3 module sustains multiple DNA methylation pathways and Polycomb silencing“的科研成果。研究揭示了植物中名為CPL2-PHD2/3的染色質(zhì)關(guān)聯(lián)功能模塊通過(guò)協(xié)調(diào)多種DNA甲基化通路和Polycomb沉默通路進(jìn)而維持基因組穩(wěn)定性和發(fā)育精確性。

具體而言,研究發(fā)現(xiàn)CPL2(RNA聚合酶II C端結(jié)構(gòu)域Ser5磷酸酶樣蛋白2)與PHD2/3(PHD finger域蛋白)形成一個(gè)獨(dú)立于BAH域蛋白AIPP3的CPL2-PHD2/3功能模塊,此模塊通過(guò)雙重機(jī)制發(fā)揮具體 作用:一方面,該模塊通過(guò)直接互作SUVH4/5蛋白強(qiáng)化SUVH4/5–CMT2反饋環(huán)路,并促進(jìn)RNA介導(dǎo)的DNA甲基化(RdDM)通路,特異性維持轉(zhuǎn)座元件(TE)的CHH DNA甲基化;另一方面,CPL2-PHD2/3作為Polycomb沉默的關(guān)鍵調(diào)控模塊,通過(guò)與LHP1互作或獨(dú)立鑒定低甲基化H3K4,從而導(dǎo)致LHP1功能缺陷位點(diǎn)的基因沉默。該研究首次建立了DNA甲基化通路(靶向TE)與Polycomb沉默(靶向基因)系統(tǒng)之間的功能橋梁,闡明了植物如何通過(guò)一個(gè)多功能樞紐整合不同的表觀遺傳信號(hào),為理解植物表觀遺傳網(wǎng)絡(luò)如何協(xié)同調(diào)控轉(zhuǎn)座元件沉默與基因表達(dá)提供了全新的調(diào)控機(jī)制。

 

英文標(biāo)題:A chromatin-linked CPL2–PHD2/3 module sustains multiple DNA methylation pathways and Polycomb silencing
中文標(biāo)題:染色質(zhì)相關(guān)的CPL2–PHD2/3模塊維持多種DNA甲基化通路和Polycomb沉默
發(fā)表時(shí)間:2025-11-20
發(fā)表期刊:PNAS
影響因子:IF9.4/Q1
技術(shù)平臺(tái):WGBS、ChIP-seq、RNA-seq
作者單位:南方科技大學(xué)、美國(guó)普渡大學(xué)、四川農(nóng)業(yè)大學(xué)等

DOI:10.1073/pnas.2523102122

盡管先前的研究結(jié)果已充分闡明多種基于染色質(zhì)的表觀遺傳通路,但其全基因組協(xié)同和互作調(diào)控機(jī)制仍知之甚少。作者先前鑒定出了BAH–PHD–CPL2復(fù)合體,其中AIPP3通過(guò)其BAH域結(jié)合H3K27me3,并與PHD2和PHD3(PHD2/3)協(xié)同,招募CPL2通過(guò)去磷酸化RNA聚合酶II以抑制轉(zhuǎn)錄。

本研究揭示了CPL2與PHD2/3形成一個(gè)獨(dú)特模塊(CPL2–PHD2/3),通過(guò)參與多種DNA甲基化通路以維持CHH DNA甲基化并沉默轉(zhuǎn)座元件(TE)中的CHH甲基化位點(diǎn)。該模塊與SUVH4和SUVH5(SUVH4/5)發(fā)生互作,在部分H3K9me2標(biāo)記區(qū)域維持SUVH4/5–CMT2介導(dǎo)的CHH甲基化。PHD3的染色質(zhì)富集同樣使該模塊能夠在含有H3K9me2、H3K27me3或兩個(gè)標(biāo)記皆不含的位點(diǎn)維持RdDM通路的CHH DNA甲基化。因此,CPL2–PHD2/3成為此前被忽略的植物DNA甲基化網(wǎng)絡(luò)多功能調(diào)控因子。此外,其基因抑制功能與DNA甲基化解偶聯(lián)。有趣的是,CPL2–PHD2/3通過(guò)與LHP1互作或鑒定低甲基化H3K4來(lái)抑制Polycomb標(biāo)記基因,也獨(dú)立沉默了大量LHP1單獨(dú)存在時(shí)無(wú)法抑制的基因,這兩類基因均對(duì)正常發(fā)育至關(guān)重要。這種雙重且?guī)缀醪灰蕾嘗HP1的抑制模式,使CPL2–PHD2/3成為Polycomb沉默的關(guān)鍵調(diào)控因子。

綜上所述,本研究結(jié)果確立了CPL2–PHD2/3作為連接協(xié)同調(diào)控DNA甲基化和Polycomb相關(guān)抑制的染色質(zhì)響應(yīng)整合因子,為多樣化的染色質(zhì)譜中對(duì)TE和基因的表觀遺傳控制提供了統(tǒng)一機(jī)制。


CPL2–PHD2/3介導(dǎo)的表觀遺傳調(diào)控模型。

  1. 在部分H3K9me2標(biāo)記位點(diǎn),CPL2–PHD2/3通過(guò)與SUVH4/5直接互作強(qiáng)化SUVH4/5–CMT2反饋環(huán)路,在跨染色質(zhì)域中維持DNA甲基化。
  2. 在其他H3K9me2富集區(qū)域,CPL2–PHD2/3在染色體臂和異染色質(zhì)中促進(jìn)RdDM。RdDM主要通過(guò)SHH1–CLSY1/2–Pol IV分支運(yùn)作,而異染色質(zhì)中CLSY3/4–Pol IV通路作用有限。
  3. 在部分H3K27me3標(biāo)記位點(diǎn),CPL2–PHD2/3維持由SHH1–CLSY1/2–Pol IV分支驅(qū)動(dòng)的RdDM,在兩個(gè)染色體區(qū)域中均發(fā)揮作用。
  4. 在大部分H3K9me2和H3K27me3缺失位點(diǎn),CPL2–PHD2/3支持RdDM,其活性主要由SHH1–CLSY1/2–Pol IV引導(dǎo),ZMP–CLSY3/4–Pol IV在全基因組范圍內(nèi)發(fā)揮次要作用。
  5. 在DNA甲基化水平降低基因位點(diǎn),CPL2–PHD2/3在強(qiáng)LHP1–H3K27me3標(biāo)記位點(diǎn)顯示中等程度富集(左),但在弱標(biāo)記(中)或無(wú)標(biāo)記(右)位點(diǎn)結(jié)合更強(qiáng),從而促進(jìn)轉(zhuǎn)錄抑制。其占位可能同時(shí)依賴于LHP1互作以及對(duì)H3K4me0和H3K4me1的識(shí)別,使其能與LHP1協(xié)同產(chǎn)生差異性調(diào)控效應(yīng)。
研究方法
1、遺傳材料構(gòu)建:
構(gòu)建phd2/3雙突變體(phd2/3C),并使用了已有的cpl2-2、aipp3-1、lhp1-4等突變體,以及通過(guò)農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化獲得的蛋白標(biāo)簽株系。

2、多組學(xué)分析:
  • 全基因組DNA甲基化測(cè)序(WGBS):對(duì)野生型(Col-0)和突變體(cpl2-2, phd2/3C11 , phd2/3C19)進(jìn)行WGBS,在全基因組范圍內(nèi)鑒定CHH、CHG和CG中的差異甲基化區(qū)域(DMRs),特別是關(guān)注CHH hypo-DMRs,以評(píng)估CPL2-PHD2/3模塊對(duì)DNA甲基化的作用。
  • 染色質(zhì)免疫沉淀測(cè)序(ChIP-seq):利用已發(fā)表及本研究產(chǎn)生的ChIP-seq數(shù)據(jù),分析了多種組蛋白修飾(H3K9me2, H3K27me3, H3K4me1, H3K4me3, H3K9ac, H3K27ac)以及蛋白(如LHP1, PHD3, Pol V)在全基因組上的分布。通過(guò)將DMRs與這些染色質(zhì)狀態(tài)圖譜進(jìn)行整合,闡明了CPL2-PHD2/3模塊發(fā)揮功能的染色質(zhì)環(huán)境。
  • RNA測(cè)序(RNA-seq):對(duì)野生型和突變體進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,鑒定差異表達(dá)基因(DEGs),以評(píng)估CPL2-PHD2/3模塊在轉(zhuǎn)錄沉默中的功能,并將表達(dá)變化與染色質(zhì)狀態(tài)、蛋白結(jié)合數(shù)據(jù)進(jìn)行關(guān)聯(lián)分析。
  • 多組學(xué)整合分析:對(duì)WGBS、ChIP-seq和RNA-seq數(shù)據(jù)進(jìn)行關(guān)聯(lián)分析,包括DMR聚類分析、信號(hào)metaplot分析、不同突變體數(shù)據(jù)集(如nrpe1, nrpd1, cmt2, suvh4/5/6, ddm1等)的交叉比對(duì),以確定CPL2-PHD2/3調(diào)控的位點(diǎn)依賴于哪條具體的DNA甲基化通路。

3、蛋白互作分析:

  • 免疫沉淀-質(zhì)譜聯(lián)用(IP-MS):鑒定與CPL2、PHD2/3蛋白互作的復(fù)合體成員,發(fā)現(xiàn)其與SUVH4/5、LHP1體內(nèi)互作。
  • 分裂熒光素酶互補(bǔ)實(shí)驗(yàn)(Split-Luc):在植物體內(nèi)驗(yàn)證CPL2、PHD2/3與SUVH4/5、LHP1之間的直接蛋白互作。
  • 酵母雙雜交實(shí)驗(yàn)(Y2H):進(jìn)一步驗(yàn)證并精細(xì)定位蛋白互作的結(jié)構(gòu)域。
結(jié)果圖形
(1)CPL2和PHD2/3協(xié)同調(diào)控長(zhǎng)轉(zhuǎn)座元件的CHH甲基化

研究人員通過(guò)構(gòu)建phd2/3 CRISPR雙突變體(phd2/3C)并與cpl2-2突變體進(jìn)行比較,利用WGBS技術(shù)在全基因組范圍內(nèi)系統(tǒng)評(píng)估了DNA甲基化狀態(tài)。分析結(jié)果顯示,在cpl2-2、phd2/3C11、phd2/3C19突變體中,CHH 低甲基化差異區(qū)域(hypo-DMRs)的數(shù)量遠(yuǎn)超過(guò)其他序列背景(CG, CHG)的DMRs或高甲基化DMRs(hyper-DMRs),表明CPL2-PHD2/3模塊主要影響非對(duì)稱的CHH甲基化(圖1A)。超過(guò)80%的CHH hypo-DMRs與轉(zhuǎn)座元件區(qū)域重疊(圖1B),并且這些DMRs所關(guān)聯(lián)的TEs長(zhǎng)度顯著長(zhǎng)于基因組中所有注釋TEs的平均長(zhǎng)度,顯示出對(duì)長(zhǎng)TEs的特異性(圖1C-D),三個(gè)突變體之間的CHH hypo-DMRs顯著重疊,表明二者在功能上高度協(xié)同。盡管CPL2與PHD2/3存在蛋白互作(圖3I-J),但轉(zhuǎn)錄水平上無(wú)相互調(diào)控,提示CPL2-PHD2/3模塊構(gòu)成一個(gè)獨(dú)立于AIPP3的亞復(fù)合體,特異性維持CHH甲基化。

WGBS技術(shù)在本研究中系統(tǒng)篩選出CPL2–PHD2/3模塊的CHH甲基化靶標(biāo),通過(guò)精確定量低甲基化水平,并與已發(fā)表的cmt2、nrpd1等突變體數(shù)據(jù)集交叉比對(duì),為后續(xù)功能分析提供了準(zhǔn)確的分子靶標(biāo)。
 
圖1:cpl2-2和phd2/3突變體中CHH低甲基化DMR特征。
  1. 低甲基化DMRs的CHH甲基化水平。
  2. CHH低甲基化DMR的分布。
  3. CHH低甲基化DMR相關(guān)TE與所有TE及SIMs的長(zhǎng)度比較。
  4. 熱圖顯示CHH低甲基化DMR相關(guān)TE、所有TE和SIMs在不同長(zhǎng)度區(qū)間內(nèi)的歸一化比例。
(2)CPL2–PHD2/3模塊在不同染色質(zhì)狀態(tài)下介導(dǎo)TE的CHH甲基化與轉(zhuǎn)錄沉默
為分析CPL2-PHD2/3模塊發(fā)揮功能的染色質(zhì)譜,研究者將合并的CHH hypo-DMRs集合與組蛋白修飾ChIP-seq數(shù)據(jù)(H3K9me2、H3K27me3)進(jìn)行交叉分析。根據(jù)與這些修飾的共定位情況,將DMRs分為三個(gè)簇(Cluster):Cluster I(n=879)富含H3K9me2(其中9個(gè)同時(shí)含H3K27me3);Cluster II(n=365)僅含H3K27me3;Cluster III(n=1686)不含這兩種抑制性標(biāo)記。Metaplot和熱圖分析(圖2A-B)展示各簇特異性組蛋白修飾富集模式:Cluster I和II分別在DMR主體及側(cè)翼區(qū)域富集H3K9me2和H3K27me3,且活躍染色質(zhì)標(biāo)記(H3K9ac、H3K27ac、H3K4me3/me1)在所有簇中均顯著缺失。

RNA-seq分析進(jìn)一步顯示,在三個(gè)突變體中,位于這些DMRs ±2kb bins內(nèi)的轉(zhuǎn)錄本水平顯著上調(diào)(圖2C),表明CPL2-PHD2/3不僅維持甲基化,也直接參與轉(zhuǎn)錄沉默。值得注意的是,Cluster I(H3K9me2富集)的轉(zhuǎn)錄本水平始終低于其他簇,且RNA Pol II占據(jù)最低,這提示DNA甲基化與H3K9me2協(xié)同強(qiáng)化沉默。

ChIP-seq通過(guò)組蛋白修飾圖譜將DMRs功能異質(zhì)性分層,揭示了模塊活性與染色質(zhì)環(huán)境的依賴性關(guān)系。特別是PHD3在Cluster I-III均顯示染色質(zhì)富集(圖3F-G),直接證明CPL2-PHD2/3模塊通過(guò)鑒定不同的組蛋白密碼(H3K9me2、H3K27me3或H3K4me0)實(shí)現(xiàn)多場(chǎng)景調(diào)控。
 

圖2:CPL2–PHD2/3調(diào)控區(qū)域的染色質(zhì)特征、表達(dá)譜以及與CHH低甲基化DMR的交叉分析。

  1. 基于與H3K9me2、H3K27me3或兩者皆缺失的重疊分析,將合并的CHH低甲基化DMR分層為三個(gè)簇。
  2. 各簇CHH低甲基化DMR ±1kb范圍內(nèi)指示組蛋白標(biāo)記和RNA Pol II的歸一化ChIP-seq信號(hào)熱圖和metaplot圖,以及比較各簇平均ChIP-seq信號(hào)箱線圖。
  3. 小提琴圖顯示各簇和基因型中的轉(zhuǎn)錄水平。
  4. CHH低甲基化DMR簇與突變體衍生DMR之間重疊的熱圖。
  5. 每個(gè)簇的DMR與suvh4/5/6和nrpe1突變體CHH低甲基化DMR之間的重疊維恩圖。
  6. 箱線圖顯示各簇特異性DMR在不同基因型中的CHH甲基化水平。
  7. 熱圖展示各簇DMR在不同基因型中的CHH甲基化模式。
(3)根據(jù)不同染色質(zhì)環(huán)境將CPL2–PHD2/3與不同甲基化通路重疊分析
基于不同簇的染色質(zhì)特征,研究者將各簇的CHH hypo-DMRs與已發(fā)表的多種DNA甲基化通路缺失突變體(如nrpe1/nrpd1代表RdDM缺陷,cmt2代表CMT2缺陷,suvh4/5/6代表H3K9甲基轉(zhuǎn)移酶缺陷,ddm1代表染色質(zhì)量塑因子缺陷)的WGBS數(shù)據(jù)進(jìn)行重疊分析(圖2D-E)。分析結(jié)果表明,Cluster I(H3K9me2富集)的DMRs與suvh4/5/6、cmt2和ddm1突變體定義的區(qū)域廣泛重疊,與RdDM (nrpe1) 區(qū)域也有中度重疊,表明在H3K9me2富集區(qū),該模塊同時(shí)與SUVH4/5-CMT2環(huán)路和RdDM通路重疊。Cluster II和III(H3K27me3或無(wú)標(biāo)記)則主要與RdDM缺陷突變體(nrpe1, nrpd1)的DMRs重疊,與cmt2重疊極少。

對(duì)甲基化水平定量分析(圖2F-G)證實(shí)了這種通路依賴性。Cluster I的CHH甲基化在cmt2、suvh4/5/6和ddm1突變體中下降更顯著;而Cluster II和III的CHH甲基化則在RdDM突變體中幾乎完全喪失。這些結(jié)果清晰地表明,CPL2-PHD2/3模塊是一個(gè)染色質(zhì)環(huán)境響應(yīng)因子,能根據(jù)局部是富含H3K9me2還是H3K27me3(或無(wú)標(biāo)記),選擇性地與SUVH4/5-CMT2維持環(huán)路或RdDM de novo甲基化通路連接,從而維持CHH甲基化。

(4)CPL2–PHD2/3主要支持由SHH1–CLSY1/2–Pol IV分支引導(dǎo)的跨染色質(zhì)域RdDM
作者為了進(jìn)一步解析CPL2-PHD2/3如何支持RdDM,研究者將DMRs細(xì)分為更具體的調(diào)控類別(CMT2特異、RdDM特異等)。分析結(jié)果表明,Clusters IIa和IIIa(占Clusters II/III的75-80%)僅與nrpd1-4 DMRs重疊,而不與cmt2-7重疊(圖3A),表明這些區(qū)域完全由RdDM調(diào)控;蚪M定位顯示,Cluster Ia和Ib偏好性定位于近著絲粒異染色質(zhì),而Clusters IIa和IIIa富集于染色體臂上(圖3B)。甲基化分析揭示,clsy1/2雙突變體和shh1單突變體在所有簇中均導(dǎo)致CHH甲基化顯著降低,而clsy3/4影響有限(圖3C),表明CPL2–PHD2/3主要依賴SHH1–CLSY1/2–Pol IV分支招募Pol IV。

ChIP-seq數(shù)據(jù)顯示,Pol V在Clusters Ib、IIa和IIIa的DMRs上強(qiáng)富集,且水平在臂區(qū)和異染色質(zhì)區(qū)相當(dāng)(圖3D-E);PHD3同樣在這些區(qū)域富集,但表現(xiàn)出明顯的臂區(qū)偏好性(圖3F-G)。ChIP-seq通過(guò)Pol V和PHD3的占用率分析,直接可視化CPL2–PHD2/3模塊在RdDM通路中的空間定位,證明了模塊通過(guò)識(shí)別H3K4me0招募至Pol V靶位點(diǎn),且其活性與Pol IV招募分支的選擇性密切相關(guān)。
 

圖3:CPL2–PHD2/3模塊根據(jù)不同染色質(zhì)環(huán)境影響CHH DNA甲基化通路。

  1. UpSet圖顯示所指示的簇、nrpd1-4和cmt2-7突變體之間共有和特有的CHH低甲基化DMRs。
  2. A中DMRs的基因組分布,劃分為近著絲粒異染色質(zhì)和染色體臂。
  3. 不同基因型中DMRs(±1 kb)的CHH甲基化水平,按子簇(A)和基因組位置(B)分層。
  4. 在所指示的子簇DMRs ±1kb范圍內(nèi)Pol V的ChIP-seq信號(hào)的metaplot圖和熱圖。
  5. 箱線圖比較按基因組位置(B)分層的各子簇Pol V的平均ChIP-seq信號(hào)。
  6. PHD3相應(yīng)的ChIP-seq分析。
  7. IP-MS分析顯示SUVH4與CPL2–PHD2/3模塊共純化箱線圖。
  8. SUVH4與CPL2–PHD2/3模塊共純化表。
  9. 分裂熒光素酶互補(bǔ)實(shí)驗(yàn)顯示CPL2–PHD2/3與SUVH4/5在煙草本塞姆氏葉片中的互作。
  10. 酵母雙雜交實(shí)驗(yàn)對(duì)所選互作進(jìn)行驗(yàn)證。
(5)LHP1與CPL2–PHD2/3互作并在PHD2/3抑制基因位點(diǎn)與H3K27me3共定位
CPL2-PHD2/3在基因沉默中的功能與Polycomb通路相關(guān)。RNA-seq分析發(fā)現(xiàn),phd2/3C突變體中上調(diào)的差異表達(dá)基因(up-DEGs)絕大多數(shù)(>60%)與LHP1的ChIP-seq結(jié)合位點(diǎn)重疊,且這些基因顯著富集在H3K27me3標(biāo)記的染色質(zhì)狀態(tài)(CS-2, CS-4, CS-5)中(圖4B、C、D)。

IP-MS和分裂熒光素酶互補(bǔ)實(shí)驗(yàn)證實(shí)了LHP1與CPL2、PHD2/3之間存在直接的物理互作(圖4F、H)。結(jié)構(gòu)域分析進(jìn)一步揭示,LHP1通過(guò)其Chromoshadow域(CSD)與CPL2和PHD2互作(圖4I)。這些結(jié)果表明,CPL2-PHD2/3模塊與經(jīng)典的Polycomb沉默reader蛋白LHP1存在功能關(guān)聯(lián),并可能共同作用于H3K27me3標(biāo)記的基因位點(diǎn)。
 

圖4:LHP1與CPL2–PHD2/3模塊物理互作,并以H3K27me3依賴方式定位于PHD2/3調(diào)控基因。

  1. UpSet圖顯示所指示突變體之間上調(diào)差異表達(dá)基因(up-DEGs)的共有和獨(dú)特集合。
  2. phd2/3C11∩19 up-DEGs在預(yù)定義染色質(zhì)狀態(tài)(CSs)中的富集情況。
  3. H3K27me3的ChIP-seq富集分析在CS-2/4/5與所有其他染色質(zhì)狀態(tài)的基因體±1 kb范圍內(nèi),通過(guò)箱線圖(左)和metaplot圖(右)可視化展示。
  4. H3K27me3相關(guān)因子靶向的phd2/3C11∩19 up-DEGs比例,顯示所有up-DEGs(左)及CS-2/4/5或Others亞群中的結(jié)果。
  5. LHP1的ChIP-seq富集分析。
  6. IP-MS分析顯示LHP1與CPL2一同與PHD2/3共純化。
  7. 全長(zhǎng)LHP1及其截短結(jié)構(gòu)域構(gòu)建體的互作實(shí)驗(yàn)示意圖。
  8. 分裂熒光素酶互補(bǔ)實(shí)驗(yàn)顯示LHP1與PHD2/3或CPL2在煙草本塞姆氏葉片中的物理互作。
  9. 酵母雙雜交實(shí)驗(yàn)顯示在含或不含3-AT的選擇性互作。
(6)CPL2–PHD2/3與LHP1–H3K27me3軸的依賴性協(xié)同關(guān)系
在lhp1-4突變體中,60.1%的上調(diào)DEGs(270/449)為L(zhǎng)HP1直接結(jié)合靶標(biāo)。盡管phd2/3C11∩19(64.8%)和cpl2-2(56.9%)的上調(diào)基因也廣泛被LHP1結(jié)合,但僅有7.6%(31/408)和7.2%(11/153)的LHP1靶標(biāo)在lhp1-4中同步去抑制,表明CPL2–PHD2/3在多數(shù)LHP1結(jié)合位點(diǎn)是必需的下游抑制因子(圖5A)。LHP1結(jié)合的靶基因呈現(xiàn)高H3K27me3、低H3K4me3/me1的特征染色質(zhì)簽名,而非LHP1靶標(biāo)則相反(圖5B)。PHD3和AIPP3在兩組基因中均持續(xù)富集,且在非LHP1靶標(biāo)中結(jié)合更強(qiáng)(圖5A)。這種分布模式支持補(bǔ)償性招募模型:在H3K27me3富集位點(diǎn),LHP1主導(dǎo)并招募CPL2-PHD2/3;而在H3K27me3缺失位點(diǎn),則由AIPP3(通過(guò)BAH域識(shí)別H3K27me3)或PHD2/3(通過(guò)PHD域識(shí)別低甲基化H3K4)來(lái)招募CPL2-PHD2/3,從而實(shí)現(xiàn)沉默。

ChIP-seq通過(guò)分層繪制基因集的組蛋白修飾譜,揭示了LHP1與CPL2–PHD2/3的層級(jí)關(guān)系,LHP1提供染色質(zhì)定位信號(hào),而CPL2–PHD2/3是實(shí)際的抑制因子。
 

圖5:CPL2–PHD2/3模塊與LHP1–H3K27me3軸在基因抑制和發(fā)育中的功能性互作

  1. UpSet圖顯示所指示突變體中差異表達(dá)基因(DEGs)與已知LHP1靶標(biāo)之間的重疊,其中維恩圖(中部)突出顯示了phd2/3 C11∩19和cpl2-2株系中LHP1靶向的上調(diào)DEGs的交集。
  2. Metaplot圖顯示突變體中上調(diào)DEGs上H3K27me3、H3K4me3和H3K4me1的ChIP-seq圖譜。
  3. 由LHP1和CPL2–PHD2/3模塊共同調(diào)控的代表性基因的RNA-seq和ChIP-seq信號(hào)IGV圖。
  4. 所指示基因型在播種后38天的典型發(fā)育表型。
(7)CPL2–PHD2/3與LHP1–H3K27me3的共有和特有功能分析
phd2/3C雙突變體表現(xiàn)出與lhp1相似的終端花序、早花、短角果等發(fā)育缺陷(圖5D),RNA-seq證實(shí)AP1、AP3、SEP3等花器官身份基因在兩者中均去抑制(圖5C)。但CPL2–PHD2/3突變體獨(dú)有下卷蓮座葉、增強(qiáng)分枝等表型,對(duì)應(yīng)于PID(非LHP1靶標(biāo),高H3K4me1)和IAMT1(LHP1靶標(biāo)但高H3K4me0)的特異性上調(diào)。全基因組分析顯示,CPL2–PHD2/3抑制基因數(shù)(640個(gè))遠(yuǎn)超lhp1(449個(gè)),且包含大量應(yīng)激應(yīng)答和節(jié)律基因(CAT3、WRKY70、ELF4等)。

這些結(jié)果表明,CPL2-PHD2/3模塊與LHP1-H3K27me3在核心發(fā)育基因上功能協(xié)同,共同建立“雙重防護(hù)”機(jī)制;但同時(shí),CPL2-PHD2/3模塊能獨(dú)立于LHP1,通過(guò)識(shí)別不同的染色質(zhì)信號(hào)(如H3K4me0),調(diào)控一套更廣泛的、對(duì)特定發(fā)育和生理過(guò)程至關(guān)重要的基因,體現(xiàn)了其功能的獨(dú)特性與可塑性。

結(jié)論和啟示
本研究通過(guò)WGBS+ChIP-seq+RNA-seq等多組學(xué)分析確立了CPL2-PHD2/3模塊是一個(gè)全新的、連接DNA甲基化與Polycomb沉默的表觀遺傳整合樞紐。CPL2-PHD2/3模塊通過(guò)響應(yīng)不同的組蛋白修飾(H3K9me2、H3K27me3、H3K4me0),靈活地調(diào)用相應(yīng)的效應(yīng)分子(SUVH4/5、CMT2、RdDM machinery、LHP1),從而在復(fù)雜的染色質(zhì)環(huán)境中實(shí)現(xiàn)對(duì)轉(zhuǎn)座元件和基因的精準(zhǔn)沉默。這一發(fā)現(xiàn)揭示了兩條關(guān)鍵的表觀遺傳協(xié)同調(diào)控通路,深化了對(duì)植物基因組表觀調(diào)控網(wǎng)絡(luò)復(fù)雜性和精細(xì)性的理解。未來(lái)研究可進(jìn)一步探索該模塊在環(huán)境響應(yīng)、作物馴化及表觀遺傳育種中的潛在應(yīng)用價(jià)值。

參考文獻(xiàn):
Zhang L, …et al, Zhu JK. A chromatin-linked CPL2-PHD2/3 module sustains multiple DNA methylation pathways and Polycomb silencing. Proc Natl Acad Sci U S A. 2025 Nov 25;122(47):e2523102122. doi: 10.1073/pnas.2523102122.
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